Voie D Attaque Du Glucose: Résidence Liotard Bordeaux

- Les bactéries peuvent utiliser les glucides par deux voies métaboliques différentes: - Une voie Fermentative dans laquelle toutes les réactions peuvent avoir lieu en l'absence de l'oxygène de l'air; il se forme des catabolites de dégradation en particulier acides, qui s'accumulent d - Une voie Oxydative dans laquelle l'oxygène de l'air est obligatoirement utilisé, et peu de catabolites acides sont formés. La recherche d'une acidité apparue par oxydation d'un glucide doit donc être faite dans un milieu peu tamponné, tel que le milieu MEVAG. ☰ Le milieu MEVAG peut être utilisé à deux fins: - Détermination de la Voie d'Attaque du Glucose, - Etude des Glucides attaqués par les bactéries oxydatives. ☰ ATTENTION: ajout de glucose stérile à 1% avant l'ensemencement Principe de milieu M. E. V. A. Le métabolisme glucidique des bactéries. G - Pour étudier la voie d'attaque d'un glucide, on utilise des milieux contenant un seul glucide et un indicateur de pH. - la présence du glucose comme seul glucide et du BBT comme indicateur de pH.

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- souche 2: observation de bactéries polymorphes, certaines sous forme de bâtonnets très courts, d'autres presques ovalaires, roses avec coloration bipolaire, se déplaçant lentement de façon sinueuse. Interpréter les observations faites pour chacun des souches testées 2. Lecture de l'isolement réalisé sur GNO (ou GTS pour Gélose Trpypticase Soja soit TSA pour Trypticase Soy agar en anglais) milieu non sélectif sur lequel l'isolement est réalisé en dernier en jour 1) Conditions d'incubation: 36 h, 37 °C L'isoelement a-t-il été correctement réalisé? Voie d attaque du glucose dans. Rappel: isoler consiste à séparer les micro-organismes à la surface d'un milieu nutritif gélifié, de manière à ce que, après culture, on obtienne des colonies bien distinctes L'isolement permet-il de valider la pureté de la suspension préparée en jour 1? Observer minutieusement... Rappels: - si oui, la galerie d'orientation est validée et interprétable - si non, les résultats de la galerie ne sont pas interprétables (et donnés sous réserver, le temps de refaire la manipulation) Quelles caractères culturaux peut-on indiquer?

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Cette technique permet la détermination du métabolisme oxydation ou fermentatif de la bactérie, autrement dit: dégrade-t-elle le glucose via le cycle de Krebs ou utilise-t-elle une autre voie? Principe [ modifier | modifier le code] Dans le milieu Hugh et Leifson auquel on ajoute du glucose, on cherche le métabolisme de la bactérie. Le milieu est régénéré (il a été maintenu en surfusion pour que les gaz dissous dans le milieu s'en échappent). Il possède donc un gradient de concentration en dioxygène (l'O 2 est plus abondant en surface qu'en profondeur). Voie d attaque du glucose avec. Les bactéries qui utilisent le glucose produisent des acides. La visualisation des productions d'acide est indiquée par le changement de couleur du bleu de bromothymol, indicateur coloré de pH contenu dans le milieu. À la fin de l'incubation, on observe le changement de couleur du milieu pour déterminer le type oxydatif ou fermentatif. Composition du milieu de Hugh et Leifson [ modifier | modifier le code]:→voir Hugh et Leifson Attention: c'est après la régénération qu'il faut ajouter une solution de glucose à 10.

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Cette technique permet la détermination du métabolisme oxydation ou fermentatif de la bactérie, autrement dit: dégrade-t-elle le glucose via le cycle de Krebs ou utilise-t-elle une autre voie? Principe Dans le milieu Hugh et Leifson auquel on ajoute du glucose, on cherche le métabolisme de la bactérie. Le milieu est régénéré (il a été maintenu en surfusion pour que les gaz dissous dans le milieu s'en échappent). Il possède donc un gradient de concentration en dioxygène (l'O 2 est plus abondant en surface qu'en profondeur). Voie d attaque du glucose plus. Les bactéries qui utilisent le glucose produisent des acides. La visualisation des productions d'acide est indiquée par le changement de couleur du bleu de bromothymol, indicateur coloré de pH contenu dans le milieu. À la fin de l'incubation, on observe le changement de couleur du milieu pour déterminer le type oxydatif ou fermentatif. Composition du milieu de Hugh et Leifson:→voir Hugh et Leifson Attention: c'est après la régénération qu'il faut ajouter une solution de glucose à 10%.

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Fiche de lecture: Lecture du milieu Hugh & Leifson.

Régénérer à 100°C pendant 30 minutes en dévissant un petit peu le bouchon pour laisser l'air s'échapper. Laisser refroidir le milieu jusqu'à ce qu'il durcisse (par exemple, gagner du temps avec un robinet d'eau froide). Utiliser une pipette pasteur fermée pour ensemencer le tube à essai en fessant une piqure centrale profonde. Viser partiellement le bouchon du tube pour laisser l'oxygène pénétrer dans le tube à essai. Recherche de la voie d'attaque du glucose - Wikipédia. Incuber à 37°C pendant 24 heures à 48 heures. Lecture, interprétation [pic 1] On observe aucun changement avant et après ensemencement donc on peut conclure que la souche de bactérie étudiée est inerte vis-à-vis du glucose. Le pH du milieu reste vert donc a un pH neutre (environ 7).

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