Voie D Attaque Du Glucose / Savatou Carte Neige

Tuesday, 2 July 2024

Cette technique permet la détermination du métabolisme oxydation ou fermentatif de la bactérie, autrement dit: dégrade-t-elle le glucose via le cycle de Krebs ou utilise-t-elle une autre voie? Principe Dans le milieu Hugh et Leifson auquel on ajoute du glucose, on cherche le métabolisme de la bactérie. Le milieu est régénéré (il a été maintenu en surfusion pour que les gaz dissous dans le milieu s'en échappent). Il possède donc un gradient de concentration en dioxygène (l'O 2 est plus abondant en surface qu'en profondeur). Les bactéries qui utilisent le glucose produisent des acides. La visualisation des productions d'acide est indiquée par le changement de couleur du bleu de bromothymol, indicateur coloré de pH contenu dans le milieu. Microbiologie de l'ETSL - Voie d'attaque du glucose. À la fin de l'incubation, on observe le changement de couleur du milieu pour déterminer le type oxydatif ou fermentatif. Composition du milieu de Hugh et Leifson:→voir Hugh et Leifson Attention: c'est après la régénération qu'il faut ajouter une solution de glucose à 10%.

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Autrement, elle pourrait se caraméliser. Technique On utilise une culture pure pour ne pas avoir de résultats faussés. On utilise deux milieux coulés en tube: la surface du premier est exposée à l'air (Tube O) tandis que l'autre est isolé de l'air avec de la paraffine liquide (Tube F). Régénération à 100 °C pendant 30 minutes. Voie d'attaque du glucose. On ajoute la solution de glucose à 10% dans les tubes contenant la gélose surfusion (10 gouttes environ) à l'aide d'une pipette pasteur. Laisser refroidir le milieu jusqu'à ce qu'il se durcisse (à mettre sous un robinet d'eau froide pour gagner du temps par exemple). On ensemence les tubes avec une pipette pasteur boutonnée ou avec une anse. On ajoute de la paraffine dans le tube F, sur une hauteur de 1 cm environ. Incubation à 37 °C pendant 24 à 48 h. Lecture Résultats possibles ( O: Ouvert - F: Fermé) 1 Tubes tel qu'ils doivent être après ensemencement 2 Haut du Tube O jaune → il y a eu un changement de couleur dû à l'acidification dans le haut du tube O uniquement: les bactéries ont besoin d'oxygène pour dégrader le glucose.

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Par addition de sang, d'agents sélectifs... galeries API Les galeries Api utilisent plusieurs types de tests: étude de la fermentation de divers glucides, auxanogramme, recherche directe d'une tubule contient un substrat différent sur lequel le micro-organisme considéré va réagir. Ils sont remplis d'une suspension bactérienne calibrée (de densité différente selon la galerie)..... Chapman au mannitol Permet l'isolement sélectif, la recherche et le dénombrement des staphylocoques pathogènes, La forte concentration en chlorure de sodium inhibe la croissance de la plupart des bactéries autres que les staphylocoques.... gélose MacConkey La gélose de MacConkey est un milieu sélectif utilisé pour l'isolement des Salmonella, des Shigella, La formulation de MacConkey pour l'isolement des entérobactéries a de nombreuses fois été modifiée depuis l'origine. Celle-ci représente la formule "classique"... Gélose Hektoen La gélose Hektoen est un milieu sélectif pour l'isolement et la différenciation des bacilles Gram (-) entéropathogènes, en particulier les Salmonelles sp.

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Autrement, elle pourrait se caraméliser. Technique [ modifier | modifier le code] On utilise une culture pure pour ne pas avoir de résultats faussés. On utilise deux milieux coulés en tube: la surface du premier est exposée à l'air (Tube O) tandis que l'autre est isolé de l'air avec de la paraffine liquide (Tube F). Régénération à 100 °C pendant 30 minutes. On ajoute la solution de glucose à 10% dans les tubes contenant la gélose surfusion (10 gouttes environ) à l'aide d'une pipette pasteur. Voie d attaque du glucose 3. Laisser refroidir le milieu jusqu'à ce qu'il se durcisse (à mettre sous un robinet d'eau froide pour gagner du temps par exemple). On ensemence les tubes avec une pipette pasteur boutonnée ou avec une anse. On ajoute de la paraffine dans le tube F, sur une hauteur de 1 cm environ. Incubation à 37 °C pendant 24 à 48 h. Lecture [ modifier | modifier le code] Résultats possibles ( O: Ouvert - F: Fermé) 1 Tubes tel qu'ils doivent être après ensemencement 2 Haut du Tube O jaune → il y a eu un changement de couleur dû à l'acidification dans le haut du tube O uniquement: les bactéries ont besoin d'oxygène pour dégrader le glucose.

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Les bactéries sont oxydatives. 3 Tubes O et F entièrement jaunes → il y a eu virage de l'indicateur coloré à cause de la production d'acide dans tout le tube: les bactéries ont utilisé le glucose en présence et en absence d'oxygène. Les bactéries sont donc fermentatives. Liste milieux de culture microbiologique. 4 Haut du tube O bleu → bactéries inertes au glucose: utilisation des peptides comme source d'énergie. Précisions Le type oxydatif ou fermentatif est étroitement lié avec le type respiratoire de la bactérie. On peut donc vérifier la cohérence des résultats avec le milieu viande-foie. Voir aussi Recherche du type respiratoire Portail de la biologie

Rappel: vérifier le milieux de culture utilisé et la température d'incubation 3. Réalisation du test de discrimination rapide Seul le test de la recherche de l'oxydase est réalisé. Justifier ce choix au vu des caractères déjà recueillis. Indiquer, pour chaque souche testée, sous forme de tableau: observation / interprétation / conclusion. 4.

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